<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">bloodjour</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Гематология и трансфузиология</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Russian journal of hematology and transfusiology</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">0234-5730</issn><issn pub-type="epub">2411-3042</issn><publisher><publisher-name>ООО Издательский дом «Практика»</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.35754/0234-5730-2021-66-3-433-444</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">bloodjour-304</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>КЛИНИЧЕСКИЕ НАБЛЮДЕНИЯ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>CASE REPORTS</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Саркома Капоши у ВИЧ-негативного больного первичным миелофиброзом</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Kaposi’s sarcoma in HIV-negative patient with primary myelofibrosis</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-6038-9474</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Егорова</surname><given-names>Е. К.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Egorova</surname><given-names>E. K.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p> Егорова Елена Константиновна, кандидат медицинских наук, врач-гематолог отделения стандартизации методов лечения</p><p> 125167, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Elena K. Egorova*, Cand. Sci. (Med.), Hematologist at the Department of Standartization of Treatment Methods </p><p> 125167, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">egorova.e@blood.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-2119-3775</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Меликян</surname><given-names>А. Л.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Melikyan</surname><given-names>A. L.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p> Меликян Анаит Левоновна, доктор медицинских наук, заведующая отделением стандартизации методов лечения</p><p> 125167, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Anait L. Melikyan, Dr. Sci. (Med.), Head of the Department of Standartization of Treatment Methods </p><p> 125167, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">anoblood@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Суборцева</surname><given-names>И. Н.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Subortseva</surname><given-names>I. N.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Суборцева Ирина Николаевна, кандидат медицинских наук, научный сотрудник, отделение стандартизации методов лечения</p><p> 125167, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Irina N. Subortseva, Cand. Sci. (Med.), Researcher, Oncologist at the Department of Standartization of Treatment Methods </p><p> 125167, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">soubortseva@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-8262-3938</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Домонова</surname><given-names>Э. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Domonova</surname><given-names>E. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p> Домонова Эльвира Алексеевна, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник отдела молекулярной диагностики и эпидемиологии</p><p> 111123, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Elvira A. Domonova, Cand. Sci. (Biol.), Senior Researcher at the Department of Molecular Diagnostics and Epidemiology, Central Research Institute of Epidemiology</p><p> 111123, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">elvira.domonova@pcr.ms</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-8412-9765</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Сильвейстрова</surname><given-names>О. Ю.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Silveystrova</surname><given-names>O. Y.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p> Сильвейстрова Ольга Юрьевна, младший научный сотрудник отдела молекулярной диагностики и эпидемиологии</p><p> 111123, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Olga Yu. Silveystrova, Junior Researcher at the Department of Molecular Diagnostics and Epidemiology, Central Research Institute of Epidemiology </p><p> 111123, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">olga.silveystrova@pcr.ms</email><xref ref-type="aff" rid="aff-2"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-0354-2361</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Чеботарев</surname><given-names>Д. И.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Chebotarev</surname><given-names>D. I.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p> Чеботарев Дмитрий Ильич, патологоанатом, патологоанатомическое отделение</p><p> 125167, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Dmitry I. Chebotarev, Pathologist at the Pathology Department </p><p> 125167, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">chebadmitry@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1082-8659</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Ковригина</surname><given-names>А. М.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kovrigina</surname><given-names>A. M.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Ковригина Алла Михайловна, доктор биологических наук, заведующая патологоанатомическим отделением</p><p> 125167, Москва </p></bio><bio xml:lang="en"><p> Alla M. Kovrigina, Dr. Sci. (Biol.), Head of the Pathology Department </p><p> 125167, Moscow </p></bio><email xlink:type="simple">kovrigina.alla@gmail.com</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр гематологии» Минздрава России</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>National Research Center for Hematology</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff-2"><aff xml:lang="ru"><institution>ФБУН «Центральный научно-исследовательский институт эпидемиологии» Роспотребнадзора</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Central Research Institute of Epidemiology, the Federal Service for Surveillance on Customers’ Rights Protection and Human Well-being Surveillance</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2021</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>24</day><month>10</month><year>2021</year></pub-date><volume>66</volume><issue>3</issue><fpage>433</fpage><lpage>444</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Егорова Е.К., Меликян А.Л., Суборцева И.Н., Домонова Э.А., Сильвейстрова О.Ю., Чеботарев Д.И., Ковригина А.М., 2021</copyright-statement><copyright-year>2021</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Егорова Е.К., Меликян А.Л., Суборцева И.Н., Домонова Э.А., Сильвейстрова О.Ю., Чеботарев Д.И., Ковригина А.М.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Egorova E.K., Melikyan A.L., Subortseva I.N., Domonova E.A., Silveystrova O.Y., Chebotarev D.I., Kovrigina A.M.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.htjournal.ru/jour/article/view/304">https://www.htjournal.ru/jour/article/view/304</self-uri><abstract><sec><title>Введение</title><p>Введение. Саркома Капоши (СК) — опухоль сосудистого происхождения с поражением кожных покровов, вовлечением внутренних органов и лимфатических узлов.</p><p>Цель — описать развитие СК у больного первичным миелофиброзом (ПМФ), развившейся на фоне лечения преднизолоном.</p></sec><sec><title>Основные сведения</title><p>Основные сведения. Для верификации диагноза СК у больного ПМФ были использованы: гистологическое, иммуногистохимическое исследования биоптатов кожи и полимеразная цепная реакция с детекцией флуоресцентного сигнала в режиме «реального времени» в количественном формате при тестировании биологических образцов (периферическая кровь, мазок со слизистой оболочки ротоглотки, биоптаты из очагов поражений кожи) для определением активности вируса герпеса человека 8. Обследование позволило установить окончательный диагноз.</p></sec></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><sec><title>Introduction</title><p>Introduction. Kaposi’s sarcoma (КS) is a multi-focal malignant tumor of vascular origin with a predominant lesion of the skin, involving internal organs and lymph nodes. Epidemic and immunosuppressive variants of the disease are considered to be the most studied and common. The main reason for the development of the immunosuppressive variant is the use of immunosuppressive drugs in patients after transplantation of solid organs. Descriptions of the development of Kaposi’s sarcoma in patients with diseases of the hematopoietic system are rare.</p><p>Aim — to describe a rare combination of a malignant tumor of vascular origin (Kaposi’s sarcoma) and a chronic myeloproliferative disease: primary myelofibrosis.</p></sec><sec><title>Main findings</title><p>Main findings. To verify the diagnosis of Kaposi’s sarcoma in a patient with primary myelofibrosis, the following were used: histological, immunohistochemical studies of skin biopsies and the polymerase chain reaction method with detection of a fl uorescent signal in “real time” in biological material samples (peripheral blood, smear from the mucous membrane of the oropharynx, skin biopsies from lesions) with quantitative determination of the activity of the human herpes virus 8. A comprehensive examination made it possible to establish the final diagnosis of multiple malignant neoplasms and recommend treatment.</p></sec></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>первичный миелофиброз</kwd><kwd>саркома Капоши</kwd><kwd>вирус герпеса человека 8</kwd><kwd>Human gammaherpesvirus 8</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>primary myelofibrosis</kwd><kwd>Kaposi’s sarcoma</kwd><kwd>Human gammaherpesvirus 8</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><sec><title>Введение</title><p>Саркома Капоши (СК) — многоочаговая злокачественная опухоль сосудистого происхождения с преимущественным поражением кожных покровов, вовлечением внутренних органов и лимфатических узлов. Болезнь впервые была описана в 1872 г. M. Kaposi и названа его именем, встречается с частотой не более, чем 1 % от всех случаев злокачественных новообразований [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. До открытия вируса этиология СК оставалась неизвестной. В 1994 г. Y. Chang и соавт. [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>] при исследовании участков поражений кожи ВИЧ-позитивных больных СК обнаружили фрагменты вирусной ДНК. Вирус получил название — ассоциированный с СК вирус герпеса человека или вирус герпеса человека 8-го типа (ВГЧ-8, Human herpesvirus 8, HHV-8). В 2016 г. HHV-8 получил видовое название Human gammaherpesvirus 8, относится к семейству Herpesviridae, подсемейству Gammaherpesvirinae, роду Rhadinovirus [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Геном вируса представлен двухцепочечной ДНК размером 170 т. п.н., которая кодирует более 80 вирусных белков [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Выделяют 6 основных подтипов HHV-8: А, В, С, D, E, F. Подтип А чаще выявляют при классической СК и СПИД-ассоциированных поражениях кожи и внутренних органов, подтипы В и С — при лимфопролиферативных заболеваниях (лимфомы, болезнь Кастлемана) [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. В геноме HHV-8 выделяют литические и латентные гены, кодирующие белки, которые характеризуют соответствующие стадии развития инфекции. Литические гены кодируют белки, в ходе реактивации которых происходит активация каскада нижестоящих генов и стимуляция микроокружения для репликации вируса, усиление метаболизма нуклеиновых кислот и модуляция клеточных функций [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. Подробно изученным среди латентных белков является ОRF73 (LANA-1, LNA или LNA-1) — латентный ядерный антиген. LANA-1, связываясь с белком р53, угнетает его транскрипционную активность, препятствует апоптозу клеток, зараженных HHV-8 [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>].</p><p>Изучение роли вирусных цитокинов в онкогенезе позволило доказать развитие ассоциированных с HHV-8 заболеваний: СК, мультицентрическая болезнь Кастлемана, первичная лимфома серозных оболочек [8–10]. Среди вирусных цитокинов К2 или вирусный интерлейкин-6 является ключевым в патогенезе СК [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. ДНК вируса встраивается в геном эндотелиальных и эпителиальных клеток, В-лимфоцитов, моноцитов, кератиноцитов [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>]. Активная репликация вируса доказана в клетках слизистой оболочки ротоглотки [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. Основные пути передачи HHV-8 — половой и трансплантационный. Доказано наличие контактно-бытового пути передачи вируса через слюну и грудное молоко, что имеет большое значение при заражении детей в эндемичных районах [14–16]. Возможна также трансплацентарная передача вируса от матери к плоду [5, 6]. HHV-8-инфекция распространена во всем мире, хотя имеются существенные различия в показателях для различных человеческих популяций: от 10 % вне эндемичных регионов (страны Северной Европы и американского континента), до 70 % — в высокоэндемичных регионах (страны Африки и Средней Азии). Частота распространения классической формы СК варьирует от 0,4 до 10,5 на 1 млн мужчин и 2,7 млн женщин. Наибольшая частота встречаемости СК наблюдается в странах центральной Африки (эндемическая СК) и средиземноморского бассейна (классическая СК) [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>].</p><p>Выделяют 4 основных варианта СК [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]:</p><p>Новообразования при СК имеют пурпурную окраску, но их цвет может варьировать от красного до фиолетового или бурого. Элементы могут быть плоскими или возвышаться над поверхностью кожных покровов, представлять собой безболезненные пятна, узелки, узлы с возможным их изъязвлением. Новообразования почти всегда располагаются на коже, реже — во внутренних органах. Гистологическая структура опухоли характеризуется множеством хаотично расположенных тонкостенных новообразованных сосудов и пучков веретенообразных клеток. Характерна инфильтрация опухоли лимфоцитами и макрофагами. Сосудистый характер опухоли резко увеличивает риск кровотечений [6, 8].</p><p>Для лечения больных СК используют цитостатические, иммуносупрессивные и противовирусные препараты [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Стандартная терапия СК включает использование в виде монорежима или в виде различных комбинаций цитостатических препаратов (алкалоидов — винкристин, винбластин, антрациклиновых антибиотиков — адриамицин, доксорубицин, даунорубицин, этопозид), препаратов интерферона альфа-2b, таксанов (паклитаксел или доцетаксел) и приводит к достижению хорошего, но не длительного ответа, безрецидивная выживаемость не превышает года [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. В настоящее время исследуются таргетные препараты, влияющие на патогенетические механизмы СК, на репликацию HHV-8 и блокаду сигнальных путей VEGF, c-Kit, m-TOR (талидомид, интерлейкин-12, hCG Angiogenesis inhibitors (SU5416, IM862, fumagillin) MMP-inhibitors (Col-3), integrin-inhibitors (EMP 121976)) [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. Продолжается поиск противовирусных препаратов в связи с неудачей применения цидофовира и фоскарнета. Интерес представляют препараты из группы ингибиторов гистон деацетилазы, способные вызывать литическую репликацию, инфицированных клеток в латентной фазе [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>].</p><p>Наиболее изучены и описаны случаи развития иммуносупрессивной и эпидемической СК. Основной причиной развития иммуносупрессивного варианта является применение лекарственных препаратов у реципиентов донорских солидных органов [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>]. Развитие СК у гематологических больных считается редким событием. Описаны случаи развития СК в результате приема иммуносупрессантов после трансплантации гемопоэтических стволовых клеток [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>], у больного хроническим миелоидным лейкозом при проведении длительной терапии иматинибом [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>], два случая СК после длительной терапии руксолитинибом по поводу первичного миелофиброза (ПМФ) [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Есть сообщения о развитии иммуносупрессивного варианта СК у больных с сопутствующей патологией (сахарный диабет, артриты) на фоне длительного приема кортикостероидных гормонов [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>].</p><p>Цель — описать развитие СК у больного ПМФ, развившейся на фоне лечения преднизолоном.</p></sec><sec><title>Клиническое наблюдение</title><p>У больного, 1947 года рождения, в 2007 г. были впервые выявлены гепатомегалия (увеличение правой доли печени до 180 мм), спленомегалия (селезенка — 164 × 84 мм), признаки портальной гипертензии (увеличение диаметра воротной вены до 17 мм, селезеночной — до 13 мм). С 2015 г. у больного отмечено появление подагрического артрита, двухростковой цитопении неясной этиологии, в связи с чем был обследован гематологом. В крови: лейкоциты — 2,0 × 10 9/л, гемоглобин — 102 г/л, эритроциты — 3,22 × 10 12/л, тромбоциты — 370 × 10 9/л, миелоциты — 1 %, палочкоядерные — 23 %, сегментоядерные — 29 %, лимфоциты — 34 %, моноциты — 10 %, СОЭ — 19 мм/час, общий белок — 68 г/л, маркеры вирусных гепатитов и ВИЧ — отрицательные. В миелограмме: пунктат костного мозга был беден клеточными элементами, бластные клетки — 3 %, отмечалась задержка созревания гранулоцитов, плазматические клетки составили 28 %. По результатам иммунохимического анализа белков сыворотки крови и концентрированной мочи было выявлено уменьшение концентрации IgM в сыворотке крови до 56 МЕ/мл, при отсутствии моноклональной секреции в сыворотке крови и белка Бенс-Джонса в моче. При гастроскопии выявлены смешанный рефлюкс-гастрит, дуоденит, при колоноскопии — долихосигма, внутренний геморрой в стадии обострения. На основании результатов обследования, проведенного по месту жительства, была заподозрена множественная миелома. В 2016 г. было выполнено обследование, включавшее в себя пункцию костного мозга, его цитологическое и иммунофенотипическое исследования. По данным миелограммы, количество плазматических клеток соответствовало норме, иммунофенотипическое исследование не выявило наличия аберрантных В-лимфоцитов и Т-лимфоцитов. Отмечалось увеличение размеров селезенки до 175 × 95 мм. Окончательный диагноз установлен не был, в связи с чем до 2017 г. больной не получал цитостатическую терапию.</p><p>В октябре 2017 г. больной был направлен в ФГБУ «НМИЦ гематологии» для уточнения диагноза и определения дальнейшей тактики лечения. При обращении предъявлял жалобы на боли в поясничном отделе позвоночника и тазобедренных суставах, слабость и повышенную утомляемость, рецидивирующий стоматит. При осмотре состояние было расценено как средней степени тяжести, кожные покровы были обычной окраски, чистые. Периферические лимфатические узлы не пальпировались. Живот был увеличен в объеме за счет гепатомегалии и спленомегалии (печень на 5 см выступала из-под края реберной дуги, селезенка — на 8 см). В анализе крови: гемоглобин — 100 г/л; эритроциты — 3,29 × 10 12/л; тромбоциты — 270 × 10 9/л; лейкоциты — 1,79 × 10 9/л, лактатдегидрогеназа (ЛДГ) — 865,1 Ед/л. При молекулярно-генетическом исследовании клеток крови была обнаружена мутация типа 2 (инсерция) в 9-м экзоне гена CALR. В миелограмме: пунктат костного мозга был умеренно-клеточный, бластные клетки составляли 3,6 %, резко сужен гранулоцитарный росток (8,4 %), лимфоциты — 16,8 %, моноциты — 2,4 %, значительно расширен эритроидный росток (68,8 %), мегакариоциты — в достаточном количестве, плазматические клетки — 0,4 %. При стандартном цитогенетическом исследовании пунктата костного мозга выявлен кариотип 46XY [<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. При гистологическом исследовании трепанобиоптата костного мозга морфологическая картина соответствовала миелопролиферативному заболеванию, ПМФ, фиброзная/остеосклеротическая стадия, степень фиброза стромы при гистохимическом исследовании с импрегнацией серебром составила более 50 %. По данным ультразвукового исследования (УЗИ) органов брюшной полости выявлены гепатомегалия (левая доля печени — 130 × 63 мм, правая — 185 × 111 мм), спленомегалия (размеры селезенки — 195 × 74 мм), портальная гипертензия (диаметр воротной вены — 18 мм, селезеночной вены — 18 мм). На основании результатов обследования, согласно критериям ВОЗ [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>], был установлен диагноз Ph-негативное хроническое миелопролиферативное заболевание (ХМПЗ): ПМФ, промежуточная — 2-я группа риска (3 балла по DIPSS) [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>]. По данным иммунохимического исследования белков сыворотки крови и концентрированной мочи в сыворотке крови была выявлена следовая моноклональная секреция А каппа, уменьшение концентрации иммуноглобулина М, увеличение концентрации бета-2-микроглобулина до 3,96 мг/л. При низкодозовой компьютерной томографии (КТ) костей скелета были обнаружены единичные участки разрежения костной ткани, наиболее крупные в проекции задней верхней ости подвздошной кости, размерами 16,5 × 10,5 мм, в верхней правой лонной кости — 18 × 11 мм, в теле третьего сакрального позвонка — 18 × 14 мм, солитарное образование в левой половине лобной пазухи размерами 30,5 × 11 × 16 мм, мягкотканной плотности, а также мягкотканные компоненты в костномозговых каналах большеберцовых и плечевых костей. От проведения биопсии мягкотканных компонентов больной отказался. Согласно критериям ВОЗ [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>] был установлен сопутствующий диагноз «моноклональная гаммапатия неясного значения» (МГНЗ) [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>].</p><p>Наличие у больного глубокой лейкопении не укладывалось в типичную картину ПМФ и было расценено как проявление гиперспленизма, возникшего на фоне длительной портальной гипертензии. Отнесение больного в промежуточную 2-ю группу риска по шкале DIPSS [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>] послужило показанием к назначению с февраля 2018 г. терапии ПМФ: гидроксикарбамид — 1000 мг/сут., преднизолон — 20 мг/сут. в течение 2 мес. с последующей полной отменой в течение 1 мес. [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]. Однако больной не выполнил рекомендации по быстрой отмене глюкокортикостероидных гормонов и дальнейший прием преднизолона контролировал самостоятельно. Терапия глюкокортикостероидами осложнилась кровотечением из прямой кишки в октябре 2018 г., а в ноябре 2018 г. при фиброгастроскопии было выявлено кровотечение из ангиоэктазии желудка. При проведении лечения с конца 2018 г. больной отметил появление потливости и синюшных, плотных, бугристых образований на коже предплечий (рис. 1). По месту жительства была выполнена биопсия новообразования на левом предплечье. При гистологическом исследовании биоптата морфологическая картина была расценена как лейомиома. В ноябре 2018 г. больной прекратил прием преднизолона и отметил кратковременное улучшение состояния в виде уменьшения потливости, стабилизации количества и размеров образований на коже.</p><p>В 2019 г. в связи с увеличением количества кожных элементов на предплечьях и голенях по месту жительства была выполнена биопсия новообразований кожи на голени и на левом предплечье (рис. 2). При гистологическом исследовании, хотя опять была заподозрена лейомиома, проводился дифференциальный диагноз между СК и веретеноклеточной гемангиомой. Для уточнения причины поражения кожных покровов больной был повторно направлен в ФГБУ «НМИЦ гематологии». При обращении в ФГБУ «НМИЦ гематологии» в июне 2019 г. предъявлял жалобы на потливость, стоматит, многочисленные образования на кожных покровах кистей, предплечий и в области левого коленного сустава. При осмотре кожные покровы были обычной окраски, влажные, на кистях, предплечьях, левой нижней конечности в области коленного сустава определялись многочисленные элементы, синюшного цвета, выступавшие над поверхностью кожи с шелушением в центре. Живот был увеличен в объеме за счет гепатоспленомегалии (печень выступала из-под края реберной дуги на 7 см, селезенка — на 10 см). Продолжал принимать гидроксикарбамид в дозе 1000 мг через день.</p><p>Было проведено рестадирование ПМФ, включавшее подсчет миелограммы, гистологическое и гистохимическое исследования трепанобиоптата костного мозга, молекулярно-генетическое исследование клеток крови, УЗИ органов брюшной полости. При обследовании не было выявлено прогрессии ПМФ. Повторно выполненное иммунохимическое исследование белков сыворотки крови не выявило усугубления моноклональной гаммапатии, при низкодозовой КТ костей скелета не обнаружили увеличения количества и размеров мягкотканных очагов. Для уточнения генеза поражения кожи были пересмотрены гистологические препараты биоптата новообразования от июня 2019 г. В срезах кожи определялось интрадермальное узловое, четко очерченное новообразование, которое было представлено пролиферацией сосудов с эпителиоподобной морфологией эндотелия, с участками веретеноклеточного строения и ветвящихся сосудов мышечного типа мелкого и среднего калибра с утолщенной стенкой (рис. 3). Морфологическая картина характеризовала субстрат новообразования сосудистой природы. Иммуногистохимическое исследование с антителами к CD34 и LANA-1 HHV-8 подтвердило сосудистую природу новообразования и выявило инфицированность опухолевых эндотелиоцитов вирусом HHV-8 (рис. 4). В результате на основании иммуногистохимического исследования биоптата кожи была диагностирована СК. Для определения вирусной активности методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с детекцией флуоресцентного сигнала в режиме «реального времени» (ПЦР-РВ) в образцах биологического материала выявили и количественно определили ДНК HHV-8 в периферической крови, мазках со слизистой оболочки ротоглотки и в биоптатах кожи из очагов поражений (из двух локусов), фиксированных в парафиновых блоках. Экстракцию ДНК выполняли с использованием набора реагентов «Рибо-преп». При исследовании биоптатов кожи, фиксированных в парафиновых блоках, проводили предварительную депарафинизацию 1 М раствором NaOH. ПЦР-исследование выполняли согласно методике, разработанной в ФБУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора, используя набор реагентов «АмплиСенс® HHV8-скрин/монитор-FL». Постановку и анализ результатов амплификации проводили на приборе «Rotor-Gene Q» (Qiagen, Германия). ДНК HHV-8 была выявлена в различных концентрациях во всех типах протестированного биологического материала больного, максимальная вирусная нагрузка была обнаружена в биоптатах кожи (табл. 1, рис. 5). Подтип HHV-8 в данной работе не определялся в связи с отсутствием необходимых реактивов.</p><fig id="fig-1"><caption><p>Рисунок 1. Новообразования синюшного цвета на левом предплечьеFigure 1. Cyanotic neoplasms on the left forearm</p></caption><graphic xlink:href="bloodjour-66-3-g001.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/bloodjour/2021/3/ZRH7lJTbXeFBAxcvVcQ3NkG0xV1Mo4Lga6BjltsD.jpeg</uri></graphic></fig><fig id="fig-2"><caption><p>Рисунок 2. Многочисленные бугристые новообразования синюшного цвета на левом предплечьеFigure 2. Numerous tuberous neoplasms of cyanotic color on the left forearm</p></caption><graphic xlink:href="bloodjour-66-3-g002.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/bloodjour/2021/3/KsN6HYKTEvXo6eY4fdzEK68T8JDxYUkXj8jtSbxo.jpeg</uri></graphic></fig><fig id="fig-3"><caption><p>Рисунок 3. А — гистологическое исследование биоптата кожи. Гематоксилин и эозин. Увеличение ×50. Массивный узловой пролиферат в дерме (указан стрелкой), отмечается формирование множественных сосудистых пространств; Б — гистологическое исследование биоптата кожи. Гематоксилин и эозин. Увеличение ×400. На большем увеличении визуализируются участки веретеноклеточной и эпителиоидной морфологии опухолевых клеток, формирующих сосудистые щелиFigure 3. А — histological examination of skin biopsy. Hematoxylin and eosin. Magnification ×50. Massive nodular proliferate in the dermis (indicated by an arrow), the formation of multiple vascular spaces is noted; B — histological examination of skin biopsy. Hematoxylin and eosin. Magnification ×400. At a larger magnification, spindle cell and epithelioid morphology of tumor cells forming vascular slots are visualized</p></caption><graphic xlink:href="bloodjour-66-3-g003.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/bloodjour/2021/3/bH3MUqgHac3cu9Ty7HoSbWZTjioOG7ZOCwzQdNog.png</uri></graphic></fig><fig id="fig-4"><caption><p>Рисунок 4. А — иммуногистохимическое исследование биоптата кожи с антителами к CD34. Увеличение ×100. Клетки пролиферата представлены эндотелиоцитами, экспрессируют CD34 (мембранная реакция); Б — иммуногистохимическое исследование биоптата кожи с антителами к LANA-1 HHV-8. Увеличение ×200. Выявлена ядерная реакция опухолевых клеток с антителами к LANA-1 HHV-8Figure 4. А — immunohistochemical study of skin biopsy. CD34. Magnification ×100. Both spindle and epithelioid-like cells are represented by atypical endothelial cells which are expressing CD34 (membranous stain); B — immunohistochemical study of skin biopsy. LANA-1 HHV-8. Magnification ×200. A nuclear stain of tumor cells represents an HHV-8-infected cells</p></caption><graphic xlink:href="bloodjour-66-3-g004.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/bloodjour/2021/3/SJaCuEXL8zHomkw80vb6STEApsvcWymNtRmf9sNf.png</uri></graphic></fig><fig id="fig-5"><caption><p>Рисунок 5. А — анализ результатов исследования образцов цельной крови, плазмы крови, мазков со слизистой оболочки ротоглотки, полученных методом ПЦР в реальном времени; Б — анализ результатов исследования образцов биоптатов кожи из очагов поражений, полученных методом ПЦР в реальном времениFigure 5. А — analysis of the results of the study of samples of whole blood, blood plasma, smears from the mucous membrane of the oropharynx obtained by real-time PCR; B — analysis of the results of the study of samples of skin biopsy samples from lesions obtained by real-time PCR</p></caption><graphic xlink:href="bloodjour-66-3-g005.png"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/bloodjour/2021/3/SKKj8M3nZarUWkwJqiz6KzeqMEN3WrRNg32fq8uB.png</uri></graphic></fig><table-wrap id="table-1"><caption><p>Таблица 1. Результаты количественного определения ДНК HHV-8 методом ПЦР-РВ в различных типах биологического материала больногоTable 1. The results of the quantitative determination of HHV-8 DNA by PCR-RT in various types of patient biological material</p></caption><table><tbody><tr><td>Тип биологического материалаType of biological material</td><td>Цельная кровьWhole blood</td><td>Плазма кровиBlood plasma</td><td>Мазок из ротоглоткиOropharyngeal swab</td><td>Биоптат кожи из первого локусаSkin biopsyfrom the first locus</td><td>Биоптат кожи из второго, локусаSkin biopsyfrom the second locus</td></tr><tr><td>Единицы измеренияUnits</td><td>lg копий/10 5 клетокlg copies/10 5 cells</td><td>копий/млcopies/ml</td><td>копий/млcopies/ml</td><td>lg копий/10 5 клетокlg copies/10 5 cells</td><td>lg копий/10 5 клетокlg copies/10 5 cells</td></tr><tr><td>Концентрация ДНК HHV-8HHV-8 DNA concentration</td><td>1,97</td><td>1,7 × 10 3</td><td>3,7 × 10 3</td><td>6,96</td><td>6, 47</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Проведенное обследование позволило диагностировать СК у ВИЧ-негативного больного ПМФ и МГНЗ, развившуюся во время лечения гидроксикарбамидом, длительного бесконтрольного приема глюкокортикостероидных гормонов. Установить вариант СК трудно. С одной стороны, у больного был вторичный иммунодефицит, обусловленный наличием двух гематологических заболеваний (ПМФ и МГНЗ), по поводу одного из которых он получал глюкокортикостероидную терапию; с другой стороны, пожилой возраст, мужской пол, классическая клиническая картина и отсутствие регресса кожных новообразований после прекращения приема преднизолона не позволили однозначно определить какой вариант СК, иммуносупрессивный или классический, был у больного в конкретном случае.</p><p>В связи с наличием гепатоспленомегалии терапия гидроксикарбамидом была продолжена в сниженной дозе по 500 мг через день. Из-за пожилого возраста, сопутствующей патологии и лейкопении стандартная терапия СК была заменена на местное лечение проспидиновой мазью. В результате отмечена стабилизация размеров и количества новообразований.</p></sec><sec><title>Обсуждение</title><p>СК представляет собой мультифакторную опухоль эндотелиального происхождения [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>]. В настоящее время доказана роль HHV-8 как этиологического фактора СК. HHV-8 обладает наибольшей тропностью к сосудистым и лимфатическим эндотелиальным клеткам, а также к различным видам гемопоэтических клеток [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>]. Период от инфицирования HHV-8 до развития СК зависит от клинического варианта опухоли. Иммуносупрессия ведет к манифестации болезни у больных, перенесших трансплантацию органов, в течение 1–2 лет, а у больных, инфицированных ВИЧ, — в течение 5–10 лет от момента инфицирования [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>]. В представленном клиническом наблюдении СК развилась у больного ПМФ и МГНЗ через 10 мес. от начала терапии гидроксикарбамидом и глюкокортикостероидами. Внезапное появление новообразований на коже послужило основанием для обследования на ВИЧ-инфекцию и гистологического исследования для установления диагноза. Изменения кожи — характерное проявление СК [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>]. Чаще всего встречаются пятна, узелки, бляшки, узлы и опухоли; значительно реже наблюдаются веррукозные, буллезные и везикулезные элементы. Наиболее характерно появление красновато-синюшных или красновато-бурых (гематомоподобных) слегка возвышающихся пятен величиной от чечевицы до 10-копеечной монеты. Относительно частым ранним проявлением СК могут быть узелки сферической или полусферической формы, величиной от просяного зерна до мелкой горошины. Короткое время узелки сохраняют розовый цвет, затем очень быстро меняют его на красновато-синюшный с коричневатым оттенком. Консистенция узелков плотноэластическая. Узелки, как правило, располагаются изолированно, но сгруппированно. В описываемом клиническом наблюдении элементы были представлены новообразованиями синюшного цвета, выступавшими над поверхностью кожи с шелушением в центре, с локализацией на предплечьях и голенях. Учитывая факт, что больной относился к группе риска (ПМФ, МГНЗ, иммуносупрессивная терапия), была заподозрена СК.</p><p>При всех вариантах СК патоморфологическая картина характеризуется хаотичным незавершенным ангиогенезом, пролиферацией веретенообразных клеток с маркерными признаками эндотелия, иммуноклеточной мононуклеарной инфильтрацией. При СК описаны изменения, которые трудно отличать от ангиосаркомы [<xref ref-type="bibr" rid="cit35">35</xref>]. В описываемом случае потребовались повторная биопсия, гистологическое и иммуногистохимическое исследования новообразований кожи. Выявление маркеров HHV-8 в периферической крови, мазках со слизистой оболочки ротоглотки и в биоптатах кожи из двух локусов явилось дополнительным критерием для установления диагноза СК.</p><p>Представленный клинический случай демонстрирует развитие СК у 70-летнего ВИЧ-негативного больного с ХМПЗ и МГНЗ на фоне вторичного иммунодефицита и длительной терапии преднизолоном. Прекращение терапии глюкокортикостероидными гормонами не позволило добиться обратного развития СК. Наличие гематологического заболевания, ПМФ, сопровождающегося двухростковой цитопенией (анемия и лейкопения), гепатоспленомегалией с портальной гипертензией ограничивало терапевтические возможности при СК. Дерматологам, гематологам, инфекционистам и врачам других специальностей следует учитывать, что СК может развиваться не только у HHV-8-инфицированных ВИЧ-позитивных больных, но и у ВИЧ-негативных больных с выраженным вторичным иммунодефицитом, обусловленным наличием гематологических заболеваний, сахарного диабета, патологии сосудов, или у больных, длительно принимающих глюкокортикостероидные гормоны.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Basalely D., Khan K.H., Cavazos G.J., et al. Pedal presentation of Kaposi’s sarcoma in a non-HIV Hispanic female: A case report and literature review. J Foot Ankle Surg. 2012; 51(3): 365–8. DOI: 10.1053/j.jfas.2012.01.012.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Basalely D., Khan K.H., Cavazos G.J., et al. Pedal presentation of Kaposi’s sarcoma in a non-HIV Hispanic female: A case report and literature review. J Foot Ankle Surg. 2012; 51(3): 365–8. DOI: 10.1053/j.jfas.2012.01.012.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Chang Y., Cesarman E., Pessin M.S., et al. Identification of herpesviruslike DNA sequences in AIDS-associated Kaposi’s sarcoma. Science. 1994; 266(5192): 1865–9. DOI: 10.1126/science.7997879.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Chang Y., Cesarman E., Pessin M.S., et al. Identifi cation of herpesviruslike DNA sequences in AIDS-associated Kaposi’s sarcoma. Science. 1994; 266(5192): 1865–9. DOI: 10.1126/science.7997879.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Orenstein J.M., Alkan S., Blauvelt A., et al. Visualization of human herpesvirus type 8 in Kaposi’s sarcoma by light and transmission electron microscopy. AIDS. 1997; 11(5): 35–45. DOI: 10.1097/00002030-199705000-00001.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Orenstein J.M., Alkan S., Blauvelt A., et al. Visualization of human herpesvirus type 8 in Kaposi’s sarcoma by light and transmission electron microscopy. AIDS. 1997; 11(5): 35–45. DOI: 10.1097/00002030-199705000-00001.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Renne R., Lagunoff M., Zhong W., et al. The size and conformation of Kaposi’s sarcoma- associated herpesvirus (human herpesvirus 8) DNA in infected cells and virions. J Virol. 1996; 70(11): 8151–4. DOI: 10.1128/JVI.70.11.8151-8154.1996.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Renne R., Lagunoff M., Zhong W., et al. The size and conformation of Kaposi’s sarcoma- associated herpesvirus (human herpesvirus 8) DNA in infected cells and virions. J Virol. 1996; 70(11): 8151–4. DOI: 10.1128/JVI.70.11.8151-8154.1996.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kadyrova E., Lacoste V., Duprez R., et al. Molecular epidemiology of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus/human herpesvirus 8 strains from Russian patients with classic, posttransplant, and AIDS-associated Kaposi’s sarcoma. J Med Virol. 2003; 71(4): 548–56. DOI: 10.1002/jmv.10530.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kadyrova E., Lacoste V., Duprez R., et al. Molecular epidemiology of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus/human herpesvirus 8 strains from Russian patients with classic, posttransplant, and AIDS-associated Kaposi’s sarcoma. J Med Virol. 2003; 71(4): 548–56. DOI: 10.1002/jmv.10530.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Гурцевич В.Э., Яковлева Л.С., Галецкий С.А. и др. Клиниковирусологические особенности заболеваний, ассоциированных с вирусом саркомы Капоши. Инфекция и иммунитет. 2011; 1(2): 151–160.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gurtsevich V.E., Yakovleva L.S., Galetskiy S.A., et al. Clinical and virological characteristics of diseases associated with Kaposi’s sarcoma virus. Infectsiya I Immunitet. 2011; 1(2): 151–160. (in Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hu J., Renne R. Characterization of the minimal replicator of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus latent origin. J Virol. 2005; 79(4): 2637–42. DOI: 10.1128/JVI.79.4.2637-2642.2005.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hu J., Renne R. Characterization of the minimal replicator of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus latent origin. J Virol. 2005; 79(4): 2637–42. DOI: 10.1128/JVI.79.4.2637-2642.2005.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Du M.Q., Bacon C.M., Isaacson P.G. Kaposi sarcoma-associated herpesvirus/human herpesvirus 8 and lymphoproliferative disorders. J Clin Pathol. 2007; 60(12): 1350–7. DOI: 10.1136/jcp.2007.047969.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Du M.Q., Bacon C.M., Isaacson P.G. Kaposi sarcoma-associated herpesvirus/human herpesvirus 8 and lymphoproliferative disorders. J Clin Pathol. 2007; 60(12): 1350–7. DOI: 10.1136/jcp.2007.047969.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Melikyan A.L., Egorova E.K., Julhakyan H.L., Kovrigina A.M. Human herpesvirus type 8 positive multicentric Castleman disease. Clin Lymphoma Myeloma Leuk. 2016; 16(Suppl): S159–65. DOI: 10.1016/j.clml.2016.03.009.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Melikyan A.L., Egorova E.K., Julhakyan H.L., Kovrigina A.M. Human herpesvirus type 8 positive multicentric Castleman disease. Clin Lymphoma Myeloma Leuk. 2016; 16(Suppl): S159–65. DOI: 10.1016/j.clml.2016.03.009.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Меликян А.Л, Егорова Е.К., Ковригина А.М. и др. Клиникоморфологические особенности различных вариантов болезни Кастлемана. Терапевтический архив. 2015: 87: 64–71. DOI: 10.17116/terarkh201587764-71.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Melikyan A.L., Egorova E.K., Kovrigina А.М., et al. Clinical and morphological features of various variants of Castleman’s disease. Terapevticheskiy arckhiv.2015; 87: 64–71. DOI: 10.17116/terarkh201587764-71. (in Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Cai Q., Verma S.C., Lu J., et al. Molecular biology of Kaposi’s sarcoma herpesvirus and related oncogenesis. Adv Virus Res. 2010; 78: 87–142. DOI: 10.1016/B978-0-12-385032-4.00003-3.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Cai Q., Verma S.C., Lu J., et al. Molecular biology of Kaposi’s sarcoma herpesvirus and related oncogenesis. Adv Virus Res. 2010; 78: 87–142. DOI: 10.1016/B978-0-12-385032-4.00003-3.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sakakibara S., Tosato G. Viral interleukin-6: role in Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus-associated malignancies. J Interferon Cytokine Res. 2011; 31(11):791–801. DOI: 10.1089/jir.2011.0043.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sakakibara S., Tosato G. Viral interleukin-6: role in Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus-associated malignancies. J Interferon Cytokine Res. 2011; 31(11):791–801. DOI: 10.1089/jir.2011.0043.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Soulier J., Grollet L., Oksenhendler E., et al. Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus-like DNA sequences in multicentric Castleman’s disease. Blood. 1995: 86(4): 1276–80.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Soulier J., Grollet L., Oksenhendler E., et al. Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus-like DNA sequences in multicentric Castleman’s disease. Blood. 1995: 86(4): 1276–80.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Plancoulaine S., Abel L., van Beveren M., et al. Human herpesvirus 8 transmission from mother to child and between siblings in an endemic population. Lancet. 2000; 356(9235): 1062–5. DOI: 10.1016/S0140-6736(00)02729-X.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Plancoulaine S., Abel L., van Beveren M., et al. Human herpesvirus 8 transmission from mother to child and between siblings in an endemic population. Lancet. 2000; 356(9235): 1062–5. DOI: 10.1016/S0140-6736(00)02729-X.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Brayfield B.P., Kankasa C., West J.T., et al. Distribution of Kaposi sarcomaassociated herpesvirus/human herpesvirus 8 in maternal saliva and breast milk in Zambia: Implications for transmission. J Infect Dis. 2004; 189(12): 2260–70. DOI: 10.1086/421119.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Brayfi eld B.P., Kankasa C., West J.T., et al. Distribution of Kaposi sarcomaassociated herpesvirus/human herpesvirus 8 in maternal saliva and breast milk in Zambia: Implications for transmission. J Infect Dis. 2004; 189(12): 2260–70. DOI: 10.1086/421119.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Butler L.M., Were W.A., Balinandi S., et al. Human herpesvirus 8 infection in children and adults in a population-based study in rural Uganda. J Infect Dis. 2011; 203(5): 625–34. DOI: 10.1093/infdis/jiq092.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Butler L.M., Were W.A., Balinandi S., et al. Human herpesvirus 8 infection in children and adults in a population-based study in rural Uganda. J Infect Dis. 2011; 203(5): 625–34. DOI: 10.1093/infdis/jiq092.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ablashi D.V., Chatlynne L.G., Whitman J.E. Jr., Cesarman E. Spectrum of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus, or human herpesvirus 8, diseases. Clin Microbiol Rev. 2002; 15(3): 439–64. DOI: 10.1128/cmr.15.3.439-464.2002.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ablashi D.V., Chatlynne L.G., Whitman J.E. Jr., Cesarman E. Spectrum of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus, or human herpesvirus 8, diseases. Clin Microbiol Rev. 2002; 15(3): 439–64. DOI: 10.1128/cmr.15.3.439-464.2002.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Martin J.N. Epidemiology of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus infection. In: Volberding P.A., Palevsky J.M., Walsh C.C. (eds). Viral and immunological malignancies. Hamilton: BC Decker Inc; 2006: 67–88.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Martin J.N. Epidemiology of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus infection. In: Volberding P.A., Palevsky J.M., Walsh C.C. (eds). Viral and immunological malignancies. Hamilton: BC Decker Inc; 2006: 67–88.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Akasbi Y., Awada A., Arifi S., et al. Non-HIV Kaposi’s sarcoma: A review and therapeutic perspectives. Bull Cancer. 2012; 99(10): 93–9. DOI: 10.1684/bdc.2012.1636.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Akasbi Y., Awada A., Arifi S., et al. Non-HIV Kaposi’s sarcoma: A review and therapeutic perspectives. Bull Cancer. 2012; 99(10): 93–9. DOI: 10.1684/bdc.2012.1636.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Сапожников А.Д., Перлина А.Д., Дымков И.Н. Регрессия саркомы Капоши после длительного лечения ингибиторами m-TOR и полной отмены иммуносупрессии у реципиента после трансплантации почки. Вестник трансплантологии и искусственных органов. 2019; 21(2): 121–4. DOI: 10.15825/1995-1191-2019-2-121-124.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sapozhnikov A.D., Perlina A.D., Dymkov I.N. Regression of Kaposi’s sarcoma after prolonged treatment with m-TOR inhibitors and complete cancellation of immunosuppression in the recipient after kidney transplantation. Vestnik transplantologii i iskusstvennykh organov. 2019; 21(2): 121–4. DOI: 10.15825/1995-1191-2019-2-121-124. (in Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ватазин А.В., Молочков В.А., Казанцева И.А. и др. Саркома Капоши у больных после трансплантации почки (опыт одного центра). Нефрология и диализ. 1999; 1(2, 3): 155–63.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vatazin A.V., Molochkov V.A., Kazantseva I.A., et al. Kaposi’s sarcoma in patients after kidney transplantation (experience of one center). Nefrologiya i dializ.1999; 1(2, 3): 155–63. (in Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Heyrman B., De Becker A., Schots R. A case report of immunosuppressionrelated Kaposi’s sarcoma after autologous stem cell transplantation. BMC Res Notes. 2016; 9: 188. DOI: 10.1186/s13104-016-1991-9.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Heyrman B., De Becker A., Schots R. A case report of immunosuppressionrelated Kaposi’s sarcoma after autologous stem cell transplantation. BMC Res Notes. 2016; 9: 188. DOI: 10.1186/s13104-016-1991-9.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Campione E., Diluvio L., Paternò E.J., et al. Kaposi’s sarcoma in a patient treated with imatinib mesylate for chronic myeloid leukemia. Clin Ther. 2009; 31(11):2565–9. DOI: 10.1016/j.clinthera.2009.11.018.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Campione E., Diluvio L., Paternò E.J., et al. Kaposi’s sarcoma in a patient treated with imatinib mesylate for chronic myeloid leukemia. Clin Ther. 2009; 31(11): 2565–9. DOI: 10.1016/j.clinthera.2009.11.018.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Omine T., Yamaguchi S., Yasumura R., et al. Iatrogenic Kaposi’s sarcoma in a myelofibrosis patient treated with ruxolitinib. J Dermatol. 2020; 47(4): e131–2. DOI: 10.1111/1346-8138.15259.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Omine T., Yamaguchi S., Yasumura R., et al. Iatrogenic Kaposi’s sarcoma in a myelofi brosis patient treated with ruxolitinib. J Dermatol. 2020; 47(4): e131–2. DOI: 10.1111/1346-8138.15259.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Loscocco G.G., Vannucchi M., Paoli C., et al. Kaposi sarcoma in a patient treated with ruxolitinib. Ann Oncol. 2017; 28(7): 1670–1. DOI: 10.1093/annonc/mdx188.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Loscocco G.G., Vannucchi M., Paoli C., et al. Kaposi sarcoma in a patient treated with ruxolitinib. Ann Oncol. 2017; 28(7): 1670–1. DOI: 10.1093/annonc/mdx188.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wani G.M., Ahmad S.M., Qayoom S., et al. Corticosteroid induced, HHV-8 positive Kaposi’s sarcoma in a non-HIV elderly patient. J IMA. 2012; 44(1): 44-1-9317. DOI: 10.5915/44-1-9317.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wani G.M., Ahmad S.M., Qayoom S., et al. Corticosteroid induced, HHV-8 positive Kaposi’s sarcoma in a non-HIV elderly patient. J IMA. 2012; 44(1): 44-1-9317. DOI: 10.5915/44-1-9317.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Endo G., Nagata N. Corticosteroid-induced Kaposi’s sarcoma revealed by severe anemia: A case report and literature review. Intern Med. 2019; 59(5): 625–31. DOI: 10.2169/internalmedicine.3394-19.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Endo G., Nagata N. Corticosteroid-induced Kaposi’s sarcoma revealed by severe anemia: A case report and literature review. Intern Med. 2019; 59(5): 625–31. DOI: 10.2169/internalmedicine.3394-19.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">WHO Classification of tumours of lymphoid and hematopoietic tissues. Lyon: IARC; 2017: 585.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">WHO Classifi cation of tumours of lymphoid and hematopoietic tissues. Lyon: IARC; 2017: 585.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Passamonti F., Cervantes F., Vannucchi A.M., et al. Dynamic International Prognostic Scoring System (DIPSS) predicts progression to acute myeloid leukemia in primary myelofibrosis. Blood. 2010; 116(15): 2857–8. DOI: 10.1182/blood-2010-06-293415.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Passamonti F., Cervantes F., Vannucchi A.M., et al. Dynamic International Prognostic Scoring System (DIPSS) predicts progression to acute myeloid leukemia in primary myelofi brosis. Blood. 2010; 116(15): 2857–8. DOI: 10.1182/blood-2010-06-293415.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Менделеева Л.П., Вотякова О.М, Покровская О.С. и др. Национальные клинические рекомендации по диагностике и лечению множественной миеломы. Гематология и трансфузиология. 2016; 61(1, Прил. 2): 1–24.DOI: 10.18821/0234-5730-2016-61-1.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mendeleeva L.P., Votyakova O.M., Pokrovskaya O.S., et al. National clinical recommendations on diagnosis and treatment of multiple myeloma. Gematologiya i transfusiologiya. 2016; 61(1, Suppl. 2): 1–24. DOI: 10.18821/0234-5730-2016-61-1. (In Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Меликян А.Л., Туркина А.Г., Ковригина А.М. и др. Клинические рекомендации по диагностике и терапии Ph-негативных миелопролиферативных заболеваний (истинная полицитемия, эссенциальная тромбоцитемия, первичный миелофиброз) (редакция 2016 г.). Гематология и трансфузиология. 2017; 62(1, Прил. 1): 1–60.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Melikyan A.L., Turkina A.G., Kovrigina A.M., et al. Clinical guidelines for the diagnosis and treatment of Ph-negative myeloproliferative diseases (polycythemia vera, essential thrombocythemia, primary myelofi brosis) (edition 2016). Gematologiya i transfuziologiya. 2017; 62(1, Suppl. 1): 1–60. (In Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kaposi M. Idiopathisches multiples Pigmentsarkom der Haut. Arch Dermatol Syph. 1872; 4(0): 265–73.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kaposi M. Idiopathisches multiples Pigmentsarkom der Haut. Arch Dermatol Syph. 1872; 4(0): 265–73.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Вольф К., Голдсмит Л.А., Кац С.И. и др. Дерматология Фицпатрика в клинической практике. Т. 2. Пер. с англ. М.: БИНОМ; 2012; 1838.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Volf K., Goldsmit L.A., Kats S.I., et al. Fitzpatrick’s Dermatology in Clinical Practice. Transl. from English. Vol. 2. Moscow: BINOM; 2012: 1838. (In Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Каламкарян А.А., Акимов В.Г., Казанцева И.А. Саркома Капоши. Новосибирск: Наука; 1986: 111.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kalamkaryan A.A., Akimov V.G., Kazanceva I.A. Kaposi’s sarcoma. Novosibirsk: Nauka; 1986: 111. (In Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ламоткин И.А. Опухоли и опухолевидные поражения кожи: атлас. М.: БИНОМ; 2006: 166.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lamotkin I.A. Tumors and tumor-like skin lesions: Atlas. Moscow: BINOM; 2006: 166. (In Russian).</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
