Изменения маркеров активации донорских тромбоцитов при хранении после проведения инактивации патогенов с помощью технологии амотосален и ультрафиолетовое облучение спектра

Представлены результаты по изучению влияния технологии редукции патогенов амотосален и  ультрафиолетовое облучение спектра А на маркеры активации донорских тромбоцитов – антиген CD62P, связывание с антителом PAC-1 под действием аденозиндифосфата (АДФ) – при суспендировании тромбоцитов в цельной плазме донора и в добавочном растворе SSP⁺, замещающем 70% донорской плазмы, при хранении до 7 сут. Во всех образцах концентратов тромбоцитов в процессе хранения наблюдалась тенденция к увеличению доли спонтанно активированных тромбоцитов и уменьшению доли тромбо- цитов, способных к специфической активации под действием агониста АДФ. Проведение патогенредукции не повлияло на способность к специфической активации тромбоцитов, но привело к увеличению доли спонтанно активированных тромбоцитов. Замещение плазмы раствором SSP⁺ привело к увеличению доли спонтанно активированных тромбоцитов, но при длительном хранении (к 7-му дню) способствовало сохранению доли функционально активных тромбоцитов.

1. Савченко В.Г., Гармаева Т.Ц., Куликов С.М., Филатов Ф.П., Судариков А.Б., Михайлова Е.А.Эффективность и безопасность трансфузионной терапии гематологических больных. Терапевтический архив. 2006; 7: 12–8.

2. Vetlesen A., Mirlashari M.R., Torsheim I.A., Kjeldsen-Kragh J. Platelet activation and residual activation potential during storage of hyperconcentrated platelet products in two different platelet additive solutions. Transfusion. 2005;45(8):1349–55.

3. Irsch J., Lin L. Pathogen Inactivation of Platelet and Plasma Blood Components for Transfusion Using the INTERCEPT. Transfus. Med. Hemotherapy.2011; 38 (1): 19–31. doi: 10.1159/000323937.

4. Hechler B., Ohlmann Ph., Chafey Ph., Ravanat C., Eckly A., Maurer E., et al. Preserved functional and biochemical characteristics of platelet components prepared with amotosalen and ultraviolet A for pathogen inactivation. Transfusion. 2013; 53(6): 1187–200. doi: 10.1111/j.1537-2995.2012.03923.x.

5. Bashir S., Cookson Ph., Wiltshire M., Hawkins L., Sonoda L., Thomas S., et el. Pathogen inactivation of platelets using ultraviolet C light: effect on in vitro function and recovery and survival of platelets. Transfusion. 2013; 53(5): 990–1000.

6. Sandgren P., Diedrich B. Pathogen inactivation of double-dose buffy-coat platelet concentrates photochemically treated with amotosalen and UVA light: preservation of in vitro function. Vox Sang. 2015; 108(4): 340–9. doi: 10.1111/vox.12232.

7. Dumont L.J., Larry J., Jose A., Friedman K.D., Vassallo R.R., Whitley P.H., et al. In vitro and in vivo quality of leukoreduced apheresis platelets stored in a new platelet additive solution. Transfusion. 2013; 53(5): 972–80.

8. Council of Europe. Guide to the preparation, use and Quality – Assurance of Blood Components. Strasbourg: Council of Europe Press; 2013. Available at: www.edqm.eu.

9. Gulliksson H., AuBuchon P., Cardigan R., Van Der Meer F., Murphy S., Prowse C. Storage of platelets in additive solutions: a multicentre study of the in vitro effects of potassium and magnesium. Vox Sang. 2003; 85(3): 199–205. doi: 10.1046/j.1423-0410.2003.00356.x.

10. Gupta A., ChandraT., Kumar A. In vitro function of random donor platelets stored for 7 days in composol platelet additive solution. Asian J. Transfus. Sci. 2011; 5(1): 11–4. doi:10.4103/0973-6247.7569.

11. Азимова М.Х., Галстян Г.М., Гапонова Т.В., Карякин А.В., Крюкова Г.Н., Нехаевская С.С. и др. Биохимические параметры концентратов донорских тромбоцитов при хранении после проведения инактивации патогенов с помощью технологии амотосален + ультрафиолетовое облучение спектра А in vitro. Гематология и трансфузиология. 2017; 62(1): 37–40.

12. Постановление Правительства РФ от 26.01.10 №29 «Об утверждении технического регламента о требованиях безопасности крови, ее продуктов, кровезамещающих растворов и технических средств, используемых в трансфузионно-инфузионной терапии» (с изменениями и дополнениями от 12.10.2010, 4.09.2012). Available at: http://www.consultant.ru/ document/cons_doc_LAW_96793/.

13. INTERCEPT viruses inactivation claims. Available at: http://www.INTERSEPTbloodsystem.com/resource-center/technicalda-sheets/INTERCEPTblood-system-for-platelets/INTERCEPTviruses.html; http://www.cerus.com; http://www.амотосален+УФА.bloodsystem.com (accessed 11 Sept 2017)

14. Shattil S.J., Hoxie J.A., Cunningham M., Brass L.F. Changes in the platelet membrane glycoprotein IIb.IIIa complex during platelet activation. Biol. Chem. 1985; 260(20): 11107–14.

15. Seghatchian J. Platelet storage lesion: an update on the impact of various leukoreduction processes on the biological response modifiers. Transfus. Apher. Sci. 2006; 34(1):125–30. doi: 10.1016/j.transci.2005.09.002

16. Klinger M.H. The storage lesion of platelets: ultrastructural and functional aspects. Ann. Hematol. 1996; 73(3): 103–12.

17. Rinder H.M., Murphy M., Mitchell J.G., Stocks J., Ault K.A., Hillman R.S. Progressive platelet activation with storage: evidence for shortened survival of activated platelets after transfusion. Transfusion. 1991; 31(5): 409–14.

18. Johnston G.I., Bliss B.A., Newman P.J., McEver P.J. Structure of the human gene encoding granule membrane protein-140, a member of the selectin family of the adhesion receptors for leukocytes. J. Biol.Chem. 1990; 265(34): 21381–85.

19. Abonnenc M., Sonego G., Crettaz D., Aliotta A., Prudent M., Tissot J.D., Lion N. In vitro study of platelet function confirms the contribution of the ultraviolet B (UVB) radiation in the lesions observed in riboflavin/UVBtreated platelet concentrates. Transfusion. 2015; 55(9): 2219–30. doi: 10.1111/ trf.13123.

20. Rasongles P., Angelini-Tibert M.F., Simon P., Currie C., Isola H., Kientz D., et al. Transfusion of platelet components prepared with photochemical pathogen inactivation treatment during a chikungunya virus epidemic in Ile de La Reunion. Transfusion. 2009; 49(6): 1083–91.

21. Prowse C.V. Component pathogen inactivation: a critical review. Vox Sang. 2013;104 (3): 183–99. doi: 10.1111/j.1423-0410.2012.01662.x

22. Ringwald J., Zimmermann R., Eckstein R. The new generation of platelet additive solution for storage at 22°С: Development and Current Experience. Transfus. Med. Rev. 2006; 20(2): 158–64. doi: 10.1016/j.tmrv.2005.11.003.

23. de Wildt-Eggen J., Schrijver J., Bins M., Gulliksson H. Storage of platelets in additive solutions:effects of magnesium and/or potassium. Transfusion. 2002; 42(1): 76–80.

24. Карпова О.В., Ройтман Е.В., Игнатова А.А., Мадзаев С.Р., Румянцев С.А., Плясунова С.А., Трахтман П.Е. Оценка качества тромбоцитного концентрата, заготовленного аферезным методом, с использованием добавочного раствора SSP+. Вопросы гематологии, онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2014; 13(2): 20–4.

25. Miyaji R., Sakai M., Urano H., Nakata K., Sakamoto H., Shirahata A. Decreased platelet aggregation of platelet concentrate during storage recovers in the body after transfusion. Transfusion. 2004; 44(6): 891–9.

26. Bikker A., Bouman E., Sebastian S., Korporaal S.J., Urbanus R.T., Fijnheer R., et al. Functional recovery of stored platelets after transfusion. Transfusion. 2016; 56(5): 1030–7. doi: 10.1111/trf.13544.