Preview

Гематология и трансфузиология

Расширенный поиск

Модицикация стромального микроокружения у больных лейкозами до и после терапии

https://doi.org/10.18821/0234-5730-2016-61-3-122-126

Аннотация

Цель исследования – охарактеризовать культуральные свойства мультипотентных мезенхимных стромальных клеток (ММСК) и колониеобразующих единиц фибробластов (КОЕф), полученных из костного мозга (КМ) больных острыми лейкозами и хроническим миелолейкозом в дебюте заболевания и после терапевтического воздействия.

Материал и методы. ММСК были получены из КМ 74 больных гемобластозами. Оценивали показатели времени до нулевого пассажа, кумулятивной клеточной продукции ММСК, а также концентрации КОЕф, полученных из КМ больных гемобластозами.

Результаты. У больных острыми лейкозами показатель времени до нулевого пассажа статистически значимо повышен в дебюте заболевания, тогда как у больных ХМЛ он сохраняется повышенным и после 3 мес терапии. Показатель суммарной клеточной продукции статистически значимо снижен в группе больных острым миелоидным лейкозом (ОМЛ) в дебюте заболевания. Концентрация КОЕф была статистически значимо снижена в обследованных группах больных в момент диагностики заболевания.

Об авторах

В. Г. Савченко
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия

125167, г. Москва



И. Н. Шипунова
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


А. Е. Бигильдеев
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


Н. И. Дризе
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


А. Г. Туркина
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


Л. А. Кузьмина
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


Т. В. Сорокина
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия

Сорокина Тамара Викторовна, врач отделения высокодозной химиотерапии гемобластозов, депрессий кроветворения и трансплантации костного мозга

125167, г. Москва



Е. Н. Паровичникова
ФГБУ «Гематологический научный центр» Минздрава России
Россия
125167, г. Москва


Список литературы

1. Calvi L.M., Adams G.B., Weibrecht K.W., Weber J.M., Olson D.P., Knight M.C., et al. Osteoblastic cells regulate the haematopoietic stem cell niche. Nature. 2003; 425(6960): 841–6.

2. Nilsson S.K., Johnston H.M., Coverdale J.A. Spatial localization of transplanted hemopoietic stem cells: inferences for the localization of stem cell niches. Blood. 2001; 97(8): 2293–9.

3. Morrison S.J., Spradling A.C. Stem cells and niches: mechanisms that promote stem cell maintenance throughout life. Cell. 2008; 132(4): 598–611.

4. Lane S.W., Scadden D.T., Gilliland D.G. The leukemic stem cell niche: current concepts and therapeutic opportunities. Blood. 2009; 114(6): 1150–7.

5. Sacchetti B., Funari A., Michienzi S., Di Cesare S., Piersanti S., Saggio I., et al. Self-renewing osteoprogenitors in bone marrow sinusoids can organize a hematopoietic microenvironment. Cell. 2007; 131(2): 324–36.

6. Friedenstein A.J., Chailakhjan R.K., Lalykina K.S. The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone marrow and spleen cells. Cell Tissue Kinet. 1970; 3(4): 393–403.

7. Pittenger M.F., Mackay A.M., Beck S.C., Jaiswal R.K., Douglas R., Mosca J.D., et al. Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells. Science. 1999; 284(5411): 143–7.

8. Frenette P.S., Pinho S., Lucas D., Scheiermann C. Mesenchymal stem cell: keystone of the hematopoietic stem cell niche and a stepping-stone for regenerative medicine. Annu. Rev. Immunol. 2013; 31: 285–316. doi: 10.1146/annurev-immunol-032712-095919.

9. Méndez-Ferrer S., Michurina T.V., Ferraro F., Mazloom A.R., MacArthur B.D., Lira S.A., et al. Mesenchymal and haematopoietic stem cells form a unique bone marrow niche. Nature. 2010; 466(7308): 829–34.

10. Friedenstein A.J. Precursor cells of mechanocytes. Int. Rev. Cytol. 1976; 47: 327–59.

11. Castro-Malaspina H., Gay R.E., Resnick G., Kapoor N., Meyers P., Chiarieri D., et al. Characterization of human bone marrow fibroblast colony-forming cells (CFU-F) and their progeny. Blood. 1980; 56(2): 289–301.

12. Konopleva M.Y., Jordan C.T. Leukemia stem cells and microenvironment: biology and therapeutic targeting. J. Clin. Oncol. 2011; 29(5): 591–9.

13. Boyerinas B., Zafrir M., Yesilkanal A.E., Price T.T., Hyjek E.M., Sipkins D.A. Adhesion to osteopontin in the bone marrow niche regulates lymphoblastic leukemia cell dormancy. Blood. 2013; 121(24): 4821–31.

14. Ben-Batalla I., Schultze A., Wroblewski M., Erdmann R., Heuser M., Waizenegger J.S., et al. Axl, a prognostic and therapeutic target in acute myeloid leukemia mediates paracrine crosstalk of leukemia cells with bone marrow stroma. Blood. 2013; 122(14): 2443–52.

15. Battula V.L., Chen Y., Cabreira Mda G., Ruvolo V., Wang Z., Ma W., et al. Connective tissue growth factor regulates adipocyte differentiation of mesenchymal stromal cells and facilitates leukemia bone marrow engraftment. Blood. 2013;122(3): 357–66. doi: 10.1182/blood-2012-06-437988.

16. Ito S., Barrett A.J., Dutra A., Pak E., Miner S., Keyvanfar K., et al. Long term maintenance of myeloid leukemic stem cells cultured with unrelated human mesenchymal stromal cells. Stem Cell Res.2015; 14(1): 95–104. doi: 10.1016/j.scr.2014.11.007.

17. Chandran P., Le Y., Li Y., Sabloff M., Mehic J., Rosu-Myles M., Allan D.S. Mesenchymal stromal cells from patients with acute myeloid leukemia have altered capacity to expand differentiated hematopoietic progenitors. Leuk. Res. 2015; 39(4): 486–93. doi: 10.1016/j.leukres.2015.01.013.

18. Geyh S., Rodriguez-Paredes M., Jager P., Khandanpour C., Cadeddu R.P., Gutekunst J., et al. Functional inhibition of mesenchymal stromal cells in acute myeloid leukemia. Leukemia. 2016; 30(3): 683–91. doi: 10.1038/leu.2015.325.

19. Prata Kde L., Orellana M.D., De Santis G.C., Kashima S., Fontes A.M., Carrara Rde C., et al. Effects of high-dose chemotherapy on bone marrow multipotent mesenchymal stromal cells isolated from lymphoma patients. Exp. Hematol. 2010; 38(4): 292–300.e4. doi: 10.1016/j.exphem.2010.01.006.

20. Nifontova I., Svinareva D., Petrova T., Drize N. Sensitivity of mesenchymal stem cells and their progeny to medicines used for the treatment of hematoproliferative diseases. Acta Haematol. 2008; 119(2): 98–103.

21. Kurtova A.V., Balakrishnan K., Chen R., Ding W., Schnabl S., Quiroga M.P., et al. Diverse marrow stromal cells protect CLL cells from spontaneous and drug-induced apoptosis: development of a reliable and reproducible system to assess stromal cell adhesion-mediated drug resistance. Blood. 2009; 114(20): 4441–50.

22. Nagao T., Hugo C.M. Characteristics and functions of fibroblast colony forming cells in human bone marrow. Rinsho Ketsueki. Japanese J. Clin. Hematol. 1983; 24(11): 1455–63.

23. Arber D.A., Orazi A., Hasserjian R., Thiele J., Borowitz M.J., Le Beau M.M., et al. The 2016 revision to the WHO classification of myeloid neoplasms and acute leukemia. Blood. 2016; 127(20): 2391–405. doi: 10.1182/blood-2016-03-643544.


Рецензия

Для цитирования:


Савченко В.Г., Шипунова И.Н., Бигильдеев А.Е., Дризе Н.И., Туркина А.Г., Кузьмина Л.А., Сорокина Т.В., Паровичникова Е.Н. Модицикация стромального микроокружения у больных лейкозами до и после терапии. Гематология и трансфузиология. 2016;61(3):122-126. https://doi.org/10.18821/0234-5730-2016-61-3-122-126

For citation:


Savchenko V.G., Shipunova I.N., Bigildeev A.E., Drize N.I., Turkina A.G., Kuzmina L.A., Sorokina T.V., Parovichnikova E.N. Alterations of the bone marrow stromal microenvironment in adult patients with acute leukemia before and after treatment. Russian journal of hematology and transfusiology. 2016;61(3):122-126. (In Russ.) https://doi.org/10.18821/0234-5730-2016-61-3-122-126

Просмотров: 406


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 0234-5730 (Print)
ISSN 2411-3042 (Online)